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猪繁殖与呼吸综合征病毒GP5蛋白间接ELISA抗体检测方法的建立及应用


现代畜牧网 http://www.cvonet.com 2024/2/28 9:31:42 关注:172 评论: 我要投稿

  猪繁殖与呼吸综合征病毒GP5蛋白间接ELISA抗体检测方法的建立及应用文|李雪平 员晓庆 高小鹏
  广州悦洋生物技术有限公司
  摘要:猪繁殖与呼吸综合征是生猪养殖中疫病防控的重点和难点,该疫病给我国养殖业造成了巨大的损失。目前,猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)疫苗已广泛使用,使用N蛋白抗体试剂盒无法有效评估疫苗免疫效果。本研究基于PRRSV GP5蛋白,建立间接ELISA检测试剂盒用于PRRSV中和抗体检测,评估猪群中疫苗免疫效果。结果:本研究的PRRSV GP5蛋白抗体检测试剂盒具有特异性高、敏感性好、稳定性好,与中和试验有良好的相关性。针对不同免疫情况的猪场进行抗体分析,其检测结果与临床的群体状态评估相符。本研究的猪繁殖与呼吸综合征病毒GP5蛋白间接 ELISA抗体检测试剂盒能够用于临床PRRSV疫苗抗体免疫评估,同时也为PRRSV免疫净化提供有力工具。
  关键词:猪繁殖与呼吸综合征病毒;GP5蛋白;间接ELISA;免疫评估01
  背景
  猪繁殖与呼吸综合征(Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome,PRRS)是由猪繁殖与呼吸综合征病毒(Porcine reproductive and respiratory syndrome virus,PRRSV)引起的一种以感染猪发热、厌食,妊娠母猪晚期流产、早产、产死胎、弱胎和木乃伊胎,各种年龄猪(特别是仔猪)呼吸障碍为特征的高度传染性疾病。我国在1996年首次报道,之后经过多次变异重组,在全国各地区猪群中长期流行,且感染率一直居高不下。针对PRRSV,疫苗免疫(如灭活疫苗、弱毒疫苗等)是最主要的防控手段,如何评价灭活疫苗和其他疫苗的免疫效果,对猪群抗体水平进行系统评价,从而合理有序地进行疫苗免疫,这对猪群的疫苗免疫将具有重要应用价值目前,市场上主要流通的是以包被N蛋白为主的蓝耳抗体检测试剂盒,也有包被GP蛋白或M蛋白的蓝耳抗体间接试剂盒,由于依赖国外进口,成本价格较高,采购周期较长的问题,不能快速、有效评价用于猪群自然感染病毒或接种疫苗后的免疫保护水平。GP5蛋白是PRRSV的重要的膜蛋白,具有良好的免疫原性,能够产生中和抗体,可用于评价疫苗免疫。本研究通过大肠杆菌表达系统,表达PRRSV GP5蛋白,并基于该蛋白建立间接ELISA检测方法用于PRRSV中和抗体检测,用于评估猪群中疫苗免疫效果。
  02
  猪繁殖与呼吸综合征病毒GP5蛋白的制备
  1 质粒构建
  根据猪繁殖与呼吸综合征病毒GP5的基因序列和氨基酸序列,对目的序列进行疏水性和亲水性,跨膜区和信号肽区域的分析,在保证抗原性和亲水性的同时去掉疏水区和信号肽区域,将根据密码子的兼容性,进行密码子优化,选定BamHI和XhoI克隆位点,将目的基因链接到表达载体质粒pET-32a(+)中,构建重组质粒pET-32a(+)-GP5(见图1),测序结果正确,测序得出GP5基因序列;


  图1:构建重组质粒pET-32a(+)-GP5图

  2表达鉴定
  将重组质粒pET-32a(+)-GP5转化E.coli BL21(DE3),得到重组表达菌株BL21-GP5,在氨苄抗性的LB平板上进行转化;挑选重组表达菌株pET-32a(+)-GP5单克隆菌,接种到4mL的LB培养基中(终浓度为0.1mM的氨苄),诱导表达鉴定的菌液对比。全菌煮沸后进行鉴定。电泳结果显示(图2,泳道2箭头),确定目的蛋白为能够大量表达。


  图2:诱导表达重组菌鉴定图

  3可溶性表达鉴定
  通过离心收集诱导后的菌体,用PBS重悬菌体沉淀;超声裂解细菌,离心后得到上清和菌体沉淀;将菌体沉淀用与上清同等体积的PBS重悬,得到沉淀悬浮液;上清与沉淀悬浮液分别进行电泳。结果:确定目的蛋白为沉淀包涵体表达。(图3,1泳道为上清,2泳道为沉淀)。


  图3:重组菌可溶性表达鉴定图

  4纯化鉴定分析
  将经鉴定呈阳性表达的重组表达菌株,大量诱导表达;采用亲和层析纯化(Ni-IDA)亲和层析柱,之后用不同咪唑浓度的平衡缓冲液洗脱目标蛋白,并收集洗脱组分进行SDS-PAGE电泳分析。经Ni-IDA亲和层析纯化后,利用BCA试剂盒进行蛋白浓度和纯度测定。猪繁殖与呼吸综合征病毒重组GP5蛋白WB鉴定。结果:纯化后的猪繁殖与呼吸综合征病毒重组GP5蛋白纯度达到95%以上,纯化后蛋白浓度为1.45mg/mL,WB检测具有良好的抗原性(详见图5)。


  图4:重组蛋白纯           

             

 图5:纯化后蛋白WB结果验证

  03
  猪繁殖与呼吸综合征病毒GP5蛋白间接ELISA抗体检测方法建立ELISA流程:包被液稀释抗原,每个孔加入100μL包被过夜;弃液,洗涤3次拍干,加入封闭液孵育;弃液,洗涤3次,拍干;稀释样本,每孔加入100μL,室温反应,弃液,洗涤3次,拍干;稀释酶标抗体,每孔加入100μL,室温反应;洗涤3次拍干。加入TMB底物显色液100μL/孔,室温反应,加入50μL/孔的终止液,酶标仪测定OD450nm值。
  1棋盘法建立体系
  按棋盘法,将抗原猪繁殖与呼吸综合征病毒重组GP5蛋白利用棋盘法筛选包被浓度,稀释倍数和酶标抗体稀释倍数。
  表1抗原最佳包被浓度、血清最佳稀释度和酶标抗体稀释倍数的P/N范围

  通过计算阳性对照血清相对OD450nm值与阴性对照血清相对OD450nm值(P/N值),通过对比不同条件下P/N值范围,确定P/N值相对较大的抗原包被浓度1μg/mL,血清最佳稀释度1:150,酶标二抗的稀释倍数为80000作为ELISA最佳反应条件。
  2优化反应条件
  在以上测定的最佳实验条件基础上,对样本孵育时间、酶标抗体孵育时间、TMB显色时间进行优化。P/N值计算结果:以阳性样品平均OD450nm值与阴性样品平均OD450nm值的比值(P/N)值相对较大的作最佳反应时间。
  通过计算阳性对照血清相对OD450nm值与阴性对照血清相对OD450nm值(P/N值)最大值,而样本孵育时间为30min、酶标抗体孵育时间为30min、TMB显色时间15min的P/N值最大,分别为5.6、4.9、5.9。
  3 ELISA临界值cut- offline的确定
  将107份正常猪血清样品(海博莱抗体检测阴性样本且猪场从未免疫过蓝耳疫苗)按1:150稀释,在筛选的最佳条件下进行间接ELISA测定,设置阴阳性对照孔,对检测结果进行统计学分析,得到OD450nm,计算S/P值平均值(X)和标准差(SD),将S/P值S/P值≥0.5时,判为阳性;即S/P值<0.5)判定阴性。
  4猪繁殖与呼吸综合征病毒重组GP5蛋白抗体间接ELISA检测的效果评价临床符合率检测,对117份临床免疫灭活疫苗的临床血清,且经Hipra抗体检测阳性的猪繁殖与呼吸综合征病毒阳性血清、53份猪繁殖与呼吸综合征病毒阴性样本(其中猪繁殖与呼吸综合征病毒阴性样本包括:圆环病毒2型阳性血清、口蹄疫O型阳性血清、口蹄疫A型阳性血清、猪瘟阳性血清和伪狂犬阳性血清各两份,由华医测检测科技有限公司提供);表2:GP5蛋白抗体试剂盒临床血清符合率试验

  检测结果:117份猪繁殖与呼吸综合征病毒阳性血清104份阳性,13份为阴性;53份阴性血清中有51份为阴性,2份为阳性。特异性为96.89%,敏感性为88.89%;假阳性率为3.77%,假阴性率为11.11%。圆环病毒2型阳性血清、口蹄疫O型阳性血清、口蹄疫A型阳性血清、猪瘟阳性血清和伪狂犬阳性血清结果均为阴性,无交叉反应。
  5 S/P相关性实验
  将猪繁殖与呼吸综合征病毒标准血清(中监所)从1:10开始连续2倍倍比稀释,到5120倍,设置阴阳性对照孔,计算S/P值。并S/P值和稀释倍数的相关性,结果表3。
  表3:标准血清S/P相关性检测

  通过将稀释倍数和S/P数值构建散点图,设置线性回归方程,其中线性回归方程为y = -0.3067x + 3.1582  R2 = 0.9863  R =0.9921。其中R=1为线性关系,本研究的R值接近为0.9921,具有良好的相关性。表明抗体水平和S/P值呈现线性相关性。
  6重复性试验
  批内和批间重复性试验
  不同批次制备的猪繁殖与呼吸综合征病毒重组GP5蛋白抗体间接ELISA检测试剂盒,对不同样品进行检测,每种样品重复8次,批内重复和批间重复试验的变异系数为范围3%—7%,均低于10%,表明该试剂盒具有良好的批内重复性和批间重复性。
  7稳定性实验
  不同批次的猪繁殖与呼吸综合征病毒GP5蛋白间接ELISA抗体检测试剂盒,进行为期15天的37℃的热稳定性实验。4℃保存的试剂盒进行对比。临床样本的OD450nm值的降解率低于30%04
  临床免疫评估
  案例1
  背景信息:某PRRSV阳性稳定猪场的34份血清,分别用两种ELISA方法:悦洋N蛋白间接ELISA抗体试剂盒,该研究建立的GP5蛋白间接ELISA方法分别进行检测,结合病毒中和试验结果进行验证。
  结果如表4所示:N蛋白抗体合格率仅为14%,GP5蛋白抗体为85%,病毒中和试验为71%,GP5蛋白抗体具有更高的符合率;而病毒中和试验与体内中和抗体水平是正相关的。
  表4:阳性稳定场PRRSV-ELISA检测结果

  案例1总结:阳性稳定场检测,N蛋白抗体检测结果无法评价猪群抗体状态,而GP5蛋白对应的是中和抗体,与保护性中和抗体呈正相关,即检测GP5蛋白抗体,可用于评估猪群中和抗体水平。此外,PRRSV相对稳定的猪群,预期临床GP5蛋白抗体合格率在70%以上。
  案例2
  背景信息:17头4周龄PRRSV抗原抗体双阴性仔猪,首免PRRSV灭活苗,28天后二免。分别在免疫后4周、攻毒后的1周与3周进行GP5蛋白抗体检测。
  结果如图6,免疫后4周PRRSV-GP5蛋白抗体(中和抗体)S/P≥0.5的占1/17,呈现比较低的应答水平;受到外来抗原刺激后,94.1%猪只免疫力迅速应答并产生较高水平GP5蛋白抗体。


  图6:PRRSV灭活疫苗免疫后攻毒GP5蛋白抗体消长规律

  案例2

  结论:免疫灭活苗后,尽管GP5蛋白抗体阳性率低,但在野毒侵袭时,可在1周内快速诱发机体产生高水平的中和抗体,GP5抗体检测有明显的消长规律。
  案例3
  背景信息:3000母猪存栏,以出售猪苗为主,2023年3月份发现母猪群里流产现象,断奶仔猪/保育猪死亡率上升,产房仔猪睾丸液送某第三检测机构测序为PRRSV-NADC30-Like毒株。
  免疫程序:2022年5月母猪普免某活苗PRRSV 0.5头份,出现野毒感染。2023年3月、2023年4月中旬分别免疫B灭活苗(普免),免疫一月后,母猪流产得到控制;产房仔猪睾丸液抗原检出率75%减少到2023年7月检出率为25%,排毒得到一定控制;仔猪14日龄免疫某活苗的PRRSV 1头份。PRRSV-GP5抗体检测:分别对其仔猪(24d)、母猪的GP5抗体进行检测,结果见图5、图6;仔猪抗体S/P均值1.6,大部分高于2.0,呈现高水平中和抗体,高度怀疑已被野毒侵袭,弱毒苗免疫后,需要4周左右,GP5抗体才产生;母猪抗体合格率88%,但离散度较大。


  图7:仔猪GP5抗体水平分析


  图8:母猪GP5抗体水平分析

  案例3总结:整体抗体阳性率为94%,呈现较好水平;该场处于阳性不稳定、低流行场过渡到-阳性稳定场的阶段;首要任务是抑制母猪排毒,并继续保持母猪群中和抗体合格率,才能保证哺乳仔猪在产房不会接触到野毒/疫苗毒。
  本案例分析:产房仔猪蓝耳病毒GP5的抗体S/P值,母猪GP5抗体S/P值较大的离散度预判,该场存在野毒或疫苗毒循环,后续跟踪证实存在NADC30-Like流行。根据对中和抗体的检测分析,与临床实际情况相符合。表明在猪繁殖与呼吸综合征病毒GP5蛋白间接 ELISA检测防控、免疫监测具有很好的指示作用。
  05
  总结展望
  猪繁殖与呼吸综合征病毒的发病率在逐年上升,给养猪业带来巨大的经济损失,属于防控难题,除了做好日常的管理的科学化和防护,疫苗免疫是目前效果较好的免疫手段。如何评价疫苗免疫效果是目前PRRSV防控中较为棘手的问题。本项目研发的猪繁殖与呼吸综合征病毒GP5蛋白间接 ELISA检测具有特异性强,敏感高,较好的相关性和稳定性,能够用于猪场疫苗免疫前后抗体水平,对PRRSV的防控具有重要意义。
  李雪平,高级兽医师,执业兽医师。广州悦洋生物技术有限公司副总经理,2005年毕业于华中农业大学动物医学院,2008年在中国农业科学院哈尔滨兽医研究所取得预防兽医硕士学位,后一直从事于动物疫病的监测服务工作,具有十多年诊断试剂相关的工作经验,在兽医诊断领域发表多篇科研论文。参先后获得广东省农业技术推广二等奖2项、湖北省科技进步二等奖1项,主导多项发明专利授权和新兽药注册证书的成功申报。先后去韩国生物科学和生物技术研究所、泰国朱拉隆宫大学进行学术交流。
  来源: 《猪业》、养猪信息网

文章来源:养猪信息网     文章编辑:一米优讯     
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